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蛋白质的十种提取方法

作者:高考题库网
来源:https://www.bjmy2z.cn/gaokao
2021-02-16 09:08
tags:

-

2021年2月16日发(作者:soway)


蛋白质的十种提取方法


.txt


大人物的悲哀在 于他们需要不停地做出选择;


而小人物的悲哀在


于他们从来没有 选择的机会。


男人因沧桑而成熟,


女人因成熟而沧桑。


男人有了烟,


有了酒,


也就有了故事;女人有了 钱,有了资色,也就有了悲剧。蛋白质提取方法


-------


列举


10



方法





[


来源:



绿谷生物网



点击数:


4587


更新时间:


2008



05



30



][


收藏本文


]


一、



植物组织蛋白质提取方法(


summer




1


、根据样品重量(


1g


样品加入


3.5ml


提取液,可根据材料不同适当加入)

,准备提取液放在


冰上。



2


、把样品放在研钵中用液氮研磨,研磨后加入提取液中在冰上静置(


3-4


小时)



< br>3


、用离心机离心


8000rpm40min4


℃或


11100rpm20min4




4


、提取上清夜,样品制备完成。



蛋白质提取液:


300ml


1



1Mtris-HCl

< p>


PH8



45ml


2


、甘油(


Glycerol



75ml


3


、聚乙 烯吡咯烷酮(


Polyvinylpolypyrrordone



6g


这种方法针对


SDS- PAGE


,垂直板电泳!




二、



植物组织蛋白质提取方法


(summer)


三氯醋酸—丙酮沉淀法



1


、在液氮中研磨叶片



2


、加入样品体积


3


倍的提 取液在


-20


℃的条件下过夜,然后离心(

4



8000rpm


以上


1


小时)


弃上清。


< /p>


3


、加入等体积的冰浴丙酮(含


0.07 %



β


-


巯基 乙醇)


,摇匀后离心(


4


< p>
8000rpm


以上


1



时)


,然后真空



干燥沉淀,备用。



4



上样前加入裂解液,


室温放置


30


分钟,


使蛋白充分溶于裂解液中,

然后离心



15



8000rpm


以上


1




时或更长时间以没有沉淀为标准)


,可临 时保存在


4


℃待用。



5


、用


Brandford


法 定量蛋白,然后可分装放入


-80


℃备用。


药品:



提取液:含


10%TCA



0.07%



β


-


巯基乙醇的丙酮



裂解液:


2.7g


尿素


0.2gCHAPS


溶于


3ml


灭菌的去离子水中(终体 积为


5ml



,使用前再加入


1M




DTT65ul/ml



< p>
这种方法针对双向电泳,杂质少,离子浓度小的特点!当然单向电泳也同样适用,只是电泳


的条带会减少!




三、



组织:肠黏膜



newinbio




目的:


WESTERN BLOT


检测凋亡相关蛋白的表达



应用


TRIPURE


提取蛋白质步骤:



含蛋白质上清液中 加入异丙醇:



1.5ml



1mlTRIPURE


用量)



倒转混匀,置室温


10min


离心:


12000 g



10min



4


度,弃上清



加入


0.3M


盐酸胍


/95


%乙醇:


< p>
2ml



1mlTRIPURE


用量)



振荡,置室温


20min


离心:


7500g



5 min



4


度,弃上清



重复

0.3M


盐酸胍


/95


%乙醇步< /p>


2




沉淀中 加入


100


%乙醇


2ml


充分振荡混匀,置室温


20 min


离心:


7500g



5min



4


度,弃上清吹干 沉淀




1



SDS


溶解沉淀


离心:


10000g



10min



4




取上清


-20


度保存(或可直接用于


WESTERN BLOT




存在的问题:加入


1



SDS


后沉淀不溶解,还是很大的一块,


4


度离心后又多了白色沉定,


SDS


结晶?测



浓度,含量才


1mg/ml


左右。



解决:提蛋白试剂盒,另外组织大小适中,要碎,立即加


2X BUFFER


,然后煮


5


< p>
10


分钟,


效果很好的。



四、



lysis solution :



yog




Protein extraction buffer (Camiolo buffer):


100 ml= (0.075M Potassium Acetate) 0.736g


(0.3M) NaCl 1.753g


(0.1M) L-arginine basic salt 1.742g


(0.01M) EDTA-HCl 0.292g


(0.25%) Triton X-100 250. ul


up to 100 ml with dH20. pH 7.4. Then 0.2 um filter.


1. Freeze tissue in liquid nitrogen.


2. Rinse in PBS then mince.


3. Add 1 ml Camiolo extraction buffer per 100 mg of tissue.


4. Homogenize for 1 minute at 4'C.


5. Spin at 3,000. rpm/15 minutes/4'C.


6. Remove supernatant and save in another tube.


7. If necessary, dialize the supernatant against PBS with


50mM/L Tris-HCl pH 7.4.



五、



植物材料:水稻苗,叶鞘,根(


ynibcas




1



200


毫克样品置于冰上磨碎



2


、加


lysis buffer


,离心,


10000rpm



4


度,


5min


取上清



3


、重复离心


5min


lysis buffer



urea np-40 ampholine 2-me pvp-40



六、



蛋白质样品制备(


sigma




秧苗蛋白质样品的提取按


Davermal

< br>等(


1986


)的方法进行。



100mg


材料剪碎后加入


10mgP VP-40(


聚乙烯吡咯烷酮


)


及少量 石英砂,用液氮研磨成粉,加入


1.5 ml 10%




氯乙酸(丙酮配制,含


10mM


即< /p>


0.07%


β


-


巯基乙醇)


,混匀,


-20


℃沉淀


1


小时,


4


℃,


15000


r/min


离心


15


min


,弃上清,沉淀复溶于


1.5ml


冷丙酮


(



10


mM


β


-


巯基乙醇


)


,再于


-20


℃ 沉淀


1


小时,同


上离心弃上清,


< p>
(有必要再用


80


%丙酮


(



10 mM


β

-


巯基乙醇所得沉淀低温冷冻真空抽干。



按每


mg


干粉加入


20


μ


l


(可调)


UKS



[9.5 M


尿素,


5mM


碳酸钾,

< p>
1.25%SDS



0.5%DTT(

< p>


硫苏糖醇


)




2% Ampholine (Amersham Pharmacia Biotech Inc



pH3.5- 10)



6% Triton X-100]

< br>,


37


℃温


< br>30min


,期间搅



动几次,


28




(温度低,高浓度的尿素会让溶液结冰)


16000 r/min


离心


15 min


,离心力


越大时间长一点



越好!上清即可上样电泳。或者


-70


度保存




七、



植物根中蛋白质的抽取(


phenol




(1) sample,


液氮研磨



(2)



1.5 ml centrifuge



tube


(3)



1M KH2PO4+K2HPO4 700 ul


(4) 12000 rpm, 4



, 10-15minite


(5)


取上层液,蛋白质就在里面




八、



SDS


extraction


followed


by


acetone


precipitation



simple


extraction


protocol


that


does not require phenol.


Recommended start protocol for whole tissue extractions.



hg p




1.


Grind


1


g


of


fresh


tissue


to


a


powder


with


liquid


nitrogen


in


a


mortar


and


pestle.


2.


Add


5


mL


of


extraction


media


(0.175


M


Tris- HCl,


pH


8.8,


5%


SDS,


15%


glycerol,


0.3


M DTT) directly to


mortar and continue grinding for an additional 30 sec.


3.


Filter


homogenate


through


two


layers


of


miracloth


into


a


50


mL


Falcon


tube


at


room


temperature.


4. Immediately add 4 volumes of ice cold 100% acetone to filtered homogenate, mix


by vortexing and place at -20


C for at least one hour to precipitate proteins.


5.


Centrifuge


at


5000


g


for


15


min


to


collect


precipitated


protein,


decant


supernatant.


6. Gently blot residual


acetone from


container with Kimwipe and then wash pellet


in


15-20 mL of cold 80%


acetone.


Be


sure


to


thoroughly


break-up


pellet


by


pipetting,


vortexing


or


sonication.


7. Repeat steps 5 and 6.


8. Collect final protein precipitate by centrifugation at 5000 g for 15 min and dry


pellet by inverting on Kimwipe


for 15 min at 37 C.


9.


Resuspend


final


pellet


in


0.5-1


mL


of


IEF


extraction


solution


(8


M


urea,


2


M


thiourea,


2% CHAPS, 2% Triton


X-100, 50 mM DTT, 0.2% pH 3-10 ampholytes) by pipetting and vortexing at 25-30 C.


Incubate sample for 1 h at


room


temperature


with


agitation.


Do


not


heat


sample


under


any


circumstances


as


this


will lead to carbamylation of


proteins.


10. Centrifuge for 10 min at 12000 g and use supernatant to rehydrate IPG strips.


11. If protein quantitation is necessary, precipitate protein sample with TCA or


acetone prior to performing


Bradford


or


Lowry


assay


as


detergents


and


reducing


agents


interfere


with


these


assays.


Phenol


extraction


followed


by


methanolic


ammonium


acetate


precipitation




an


effective protocol for sample


preparation


from


protein-poor,


recalcitrant


tissues


such


as


plants


(see


Hurkman


and


Tanaka, 1986, Plant


Physiology 81:802-80



九、



材料:细菌蛋白(


puc18




用甲醇提取 的,


冻干后用缓冲液溶解的。


样品缓冲液是一般的。

< p>
其中含又


2%



SDS< /p>



20mmol



2-


巯基乙



醇。




十、



线粒体蛋白的提取


(bioon)


Isolation for Mitochondria


Modification by Bioon


Materials and reagents:


homogenizing buffer:


100 mM mannitol


10 mM Tris-HCl buffer (pH 7.5)


5 mM MgCl2













1 mM EGTA


1 mM DTT


leupeptin (0.1 ug/ml)


0.1M Na2CO3


Methods:


- 10*6 Cells were washed with ice-cold PBS and lysed by homogenizing in 1 ml buffer


(ice-cold) containing 100


mM mannitol, 10 mM Tris, 5 mM MgCl2, 1 mM EGTA, 1 mM DTT, leupeptin (0.1 ug/ml)


- Subjected to Polytron homogenization for three-four bursts of 3-10 s each at a


setting of 6.5.


-


Intact


cells


and


nuclei


were


separated


by


centrifugation


at


120


g


for


5


min


at


4




-


Supernatants


were


centrifuged


at


10,000


g


for


10


min


to


collect


the


heavy


(mitochondrial) membrane pellet.


-


Cytoplasmic


fractions


were


obtained


by


centrifuging


supernatants


at


100,000


g


for


30 min.


- Resuspended pellet to 0.25mg/ml in fresh preparation of 0.1M Na2CO3 (pH 11.5)


- Incubated on ice for 30 min.


- Ultracentrifugation at 100000g for 1h at 4



to precipitate the mitochondria


membrane protein. And the


supernatants are mitochondrial matrix. 0.5mg of proteins in mitochondria can get


100ug of proteins (the


alkali-resistant fractions)


Ref.: PNAS, 2002



99



12825


< br>12830


本方法只适用于提大鼠细胞线粒体蛋白,而不适用于线粒体功能检测




















































介:


















剂盒



(Comm


assie



Blue



Staining



Kit)













< br>染色




方法,









亮蓝



R250





料,



可用于



SDS- PA


GE







P


AGE





电泳凝







色< /p>





色,或< /p>



Western


转膜后



P


AGE





余蛋白



测。









使





盒< /p>









< p>









达到



2-3


小时




可< /p>







带;


采用






< p>




方法



20




分钟


< /p>









< p>
















需染









间。









染< /p>









< p>
















有< /p>









< p>
酸。









件:



< /p>








有效。









项:











使
















< br>染



容器。


< br>和






















使



< br>性








护。
















穿







< br>请








作。








使


明:






1.









方法:




a.

















-


-


-


-


-


-


-


-



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