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蛋白质的十种提取方法
.txt
大人物的悲哀在
于他们需要不停地做出选择;
而小人物的悲哀在
于他们从来没有
选择的机会。
男人因沧桑而成熟,
女人因成熟而沧桑。
男人有了烟,
有了酒,
也就有了故事;女人有了
钱,有了资色,也就有了悲剧。蛋白质提取方法
-------
列举
10
种
方法
[
来源:
绿谷生物网
点击数:
4587
更新时间:
2008
年
05
月
30
日
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一、
植物组织蛋白质提取方法(
p>
summer
)
1
、根据样品重量(
1g
样品加入
p>
3.5ml
提取液,可根据材料不同适当加入)
,准备提取液放在
冰上。
2
p>
、把样品放在研钵中用液氮研磨,研磨后加入提取液中在冰上静置(
3-4
小时)
。
< br>3
、用离心机离心
8000rpm40min4
℃或
11100rpm20min4
℃
4
、提取上清夜,样品制备完成。
蛋白质提取液:
300ml
1
、
1Mtris-HCl
(
PH8
)
45ml
2
、甘油(
Glycerol
)
75ml
3
、聚乙
烯吡咯烷酮(
Polyvinylpolypyrrordone
)
6g
这种方法针对
SDS-
PAGE
,垂直板电泳!
二、
植物组织蛋白质提取方法
(summer)
三氯醋酸—丙酮沉淀法
1
、在液氮中研磨叶片
2
、加入样品体积
3
倍的提
取液在
-20
℃的条件下过夜,然后离心(
4
℃
8000rpm
以上
1
小时)
弃上清。
<
/p>
3
、加入等体积的冰浴丙酮(含
0.07
%
的
β
-
巯基
乙醇)
,摇匀后离心(
4
℃
8000rpm
以上
1
小
时)
,然后真空
干燥沉淀,备用。
4
、
上样前加入裂解液,
室温放置
30
分钟,
使蛋白充分溶于裂解液中,
然后离心
(
15
℃
8000rpm
以上
1
小
p>
时或更长时间以没有沉淀为标准)
,可临
时保存在
4
℃待用。
5
、用
Brandford
法
定量蛋白,然后可分装放入
-80
℃备用。
药品:
提取液:含
10%TCA
和
0.07%
的
β
-
p>
巯基乙醇的丙酮
裂解液:
2.7g
尿素
0.2gCHAPS
溶于
3ml
灭菌的去离子水中(终体
积为
5ml
)
,使用前再加入
1M
的
DTT65ul/ml
。
这种方法针对双向电泳,杂质少,离子浓度小的特点!当然单向电泳也同样适用,只是电泳
的条带会减少!
三、
组织:肠黏膜
(
newinbio
)
目的:
WESTERN
BLOT
检测凋亡相关蛋白的表达
应用
TRIPURE
提取蛋白质步骤:
含蛋白质上清液中
加入异丙醇:
(
1.5ml
每
1mlTRIPURE
用量)
倒转混匀,置室温
10min
离心:
12000 g
,
10min
,
4
度,弃上清
加入
0.3M
盐酸胍
/95
%乙醇:
(
2ml
每
1mlTRIPURE
用量)
振荡,置室温
20min
离心:
7500g
,
5
min
,
4
度,弃上清
重复
0.3M
盐酸胍
/95
%乙醇步<
/p>
2
次
沉淀中
加入
100
%乙醇
2ml
充分振荡混匀,置室温
20 min
离心:
7500g
,
5min
,
4
度,弃上清吹干
沉淀
1
%
SDS
溶解沉淀
离心:
10000g
,
10min
,
4
度
取上清
-20
度保存(或可直接用于
WESTERN
BLOT
)
存在的问题:加入
1
%
SDS
后沉淀不溶解,还是很大的一块,
4
度离心后又多了白色沉定,
SDS
结晶?测
浓度,含量才
1mg/ml
左右。
解决:提蛋白试剂盒,另外组织大小适中,要碎,立即加
2X
BUFFER
,然后煮
5
-
10
分钟,
效果很好的。
四、
lysis solution
:
(
yog
)
Protein extraction buffer (Camiolo
buffer):
100 ml= (0.075M Potassium
Acetate) 0.736g
(0.3M) NaCl 1.753g
(0.1M) L-arginine basic salt 1.742g
(0.01M) EDTA-HCl 0.292g
(0.25%) Triton X-100 250. ul
up to 100 ml with dH20. pH 7.4. Then
0.2 um filter.
1. Freeze tissue in
liquid nitrogen.
2. Rinse in PBS then
mince.
3. Add 1 ml Camiolo extraction
buffer per 100 mg of tissue.
4.
Homogenize for 1 minute at 4'C.
5. Spin
at 3,000. rpm/15 minutes/4'C.
6. Remove
supernatant and save in another tube.
7. If necessary, dialize the
supernatant against PBS with
50mM/L
Tris-HCl pH 7.4.
五、
植物材料:水稻苗,叶鞘,根(
ynibcas
)
1
、
200
毫克样品置于冰上磨碎
2
、加
lysis buffer
p>
,离心,
10000rpm
,
4
度,
5min
取上清
3
、重复离心
5min
lysis buffer
:
urea
np-40 ampholine 2-me pvp-40
六、
蛋白质样品制备(
sigma
)
秧苗蛋白质样品的提取按
Davermal
< br>等(
1986
)的方法进行。
100mg
材料剪碎后加入
10mgP
VP-40(
聚乙烯吡咯烷酮
)
及少量
石英砂,用液氮研磨成粉,加入
1.5 ml 10%
三
氯乙酸(丙酮配制,含
10mM
即<
/p>
0.07%
β
-
巯基乙醇)
,混匀,
-20
℃沉淀
p>
1
小时,
4
℃,
15000
r/min
离心
15
min
,弃上清,沉淀复溶于
1.5ml
冷丙酮
(
含
10
mM
β
-
巯基乙醇
p>
)
,再于
-20
℃
沉淀
1
小时,同
上离心弃上清,
(有必要再用
80
%丙酮
(
含
10 mM
β
-
巯基乙醇所得沉淀低温冷冻真空抽干。
按每
mg
干粉加入
20
μ
l
(可调)
UKS
液
[9.5
M
尿素,
5mM
碳酸钾,
1.25%SDS
,
0.5%DTT(
二
硫苏糖醇
)
,
2% Ampholine (Amersham
Pharmacia Biotech Inc
,
pH3.5-
10)
,
6% Triton X-100]
< br>,
37
℃温
育
< br>30min
,期间搅
动几次,
28
度
(温度低,高浓度的尿素会让溶液结冰)
16000
r/min
离心
15
min
,离心力
越大时间长一点
越好!上清即可上样电泳。或者
-70
度保存
七、
植物根中蛋白质的抽取(
phenol
)
(1) sample,
液氮研磨
(2)
装
1.5 ml
centrifuge
用
tube
(3)
加
1M
KH2PO4+K2HPO4 700 ul
(4) 12000 rpm,
4
度
, 10-15minite
(5)
取上层液,蛋白质就在里面
八、
SDS
extraction
followed
by
acetone
precipitation
–
simple
extraction
protocol
that
does not require
phenol.
Recommended start protocol for
whole tissue extractions.
(
hg
p
)
1.
Grind
1
g
of
fresh
tissue
to
a
powder
with
liquid
nitrogen
in
a
mortar
and
pestle.
2.
Add
5
mL
of
extraction
media
(0.175
M
Tris-
HCl,
pH
8.8,
5%
SDS,
15%
glycerol,
0.3
M
DTT) directly to
mortar and continue
grinding for an additional 30 sec.
3.
Filter
homogenate
through
two
layers
of
miracloth
into
a
50
mL
Falcon
tube
at
room
temperature.
4. Immediately
add 4 volumes of ice cold 100% acetone to filtered
homogenate, mix
by vortexing and place
at -20
C for at least one hour to
precipitate proteins.
5.
Centrifuge
at
5000
g
for
15
min
to
collect
precipitated
protein,
decant
supernatant.
6. Gently blot
residual
acetone from
container with Kimwipe and then wash
pellet
in
15-20 mL of cold
80%
acetone.
Be
sure
to
thoroughly
break-up
pellet
by
pipetting,
vortexing
or
sonication.
7.
Repeat steps 5 and 6.
8. Collect final
protein precipitate by centrifugation at 5000 g
for 15 min and dry
pellet by inverting
on Kimwipe
for 15 min at 37 C.
9.
Resuspend
final
pellet
in
0.5-1
mL
of
IEF
extraction
solution
(8
M
urea,
2
M
thiourea,
2% CHAPS, 2%
Triton
X-100, 50 mM DTT, 0.2% pH 3-10
ampholytes) by pipetting and vortexing at 25-30 C.
Incubate sample for 1 h at
room
temperature
with
agitation.
Do
not
heat
sample
under
any
circumstances
as
this
will lead to
carbamylation of
proteins.
10. Centrifuge for 10 min at 12000 g
and use supernatant to rehydrate IPG strips.
11. If protein quantitation is
necessary, precipitate protein sample with TCA or
acetone prior to performing
Bradford
or
Lowry
assay
as
detergents
and
reducing
agents
interfere
with
these
assays.
Phenol
extraction
followed
by
methanolic
ammonium
acetate
precipitation
–
an
effective protocol for sample
preparation
from
protein-poor,
recalcitrant
tissues
such
as
plants
(see
Hurkman
and
Tanaka, 1986, Plant
Physiology 81:802-80
九、
材料:细菌蛋白(
puc18
)
用甲醇提取
的,
冻干后用缓冲液溶解的。
样品缓冲液是一般的。
其中含又
2%
的
SDS<
/p>
,
20mmol
的
2-
巯基乙
醇。
十、
线粒体蛋白的提取
(bioon)
Isolation for Mitochondria
Modification by Bioon
Materials and reagents:
homogenizing buffer:
100 mM
mannitol
10 mM Tris-HCl buffer (pH 7.5)
5 mM MgCl2
关
于
蛋
白
质
1 mM EGTA
1 mM
DTT
leupeptin (0.1 ug/ml)
0.1M Na2CO3
Methods:
- 10*6 Cells were washed with ice-cold
PBS and lysed by homogenizing in 1 ml buffer
(ice-cold) containing 100
mM
mannitol, 10 mM Tris, 5 mM MgCl2, 1 mM EGTA, 1 mM
DTT, leupeptin (0.1 ug/ml)
- Subjected
to Polytron homogenization for three-four bursts
of 3-10 s each at a
setting of 6.5.
-
Intact
cells
and
nuclei
were
separated
by
centrifugation
at
120
g
for
5
min
at
4
℃
-
Supernatants
were
centrifuged
at
10,000
g
for
10
min
to
collect
the
heavy
(mitochondrial) membrane pellet.
-
Cytoplasmic
fractions
were
obtained
by
centrifuging
supernatants
at
100,000
g
for
30 min.
-
Resuspended pellet to 0.25mg/ml in fresh
preparation of 0.1M Na2CO3 (pH 11.5)
-
Incubated on ice for 30 min.
-
Ultracentrifugation at 100000g for 1h at
4
℃
to precipitate the
mitochondria
membrane protein. And the
supernatants are mitochondrial matrix.
0.5mg of proteins in mitochondria can get
100ug of proteins (the
alkali-resistant fractions)
Ref.: PNAS, 2002
,
99
:
12825
–
< br>12830
本方法只适用于提大鼠细胞线粒体蛋白,而不适用于线粒体功能检测
p>
考
亮
马
蓝
斯
染
色
一
产
介:
品
简
本
考
马
斯
亮
蓝
p>
染
色
试
剂盒
(Comm
assie
Blue
Staining
Kit)
p>
采
最
的
斯
用
经
考
亮
了
典
马
蓝
< br>染色
和
方法,
以
脱
色
考
马
亮蓝
R250
为
斯
染
料,
可用于
SDS-
PA
GE
或
非
变
性
P
AGE
等
蛋
白
电泳凝
胶
规
和
常
色<
/p>
脱
的
染
色,或<
/p>
Western
转膜后
P
AGE
胶
上
残
余蛋白
的
测。
检
使
用
本
试
盒<
/p>
用
,
剂
采
常
色
方
计
规
脱
法
时
染
色
累
间
达到
2-3
小时
后
可<
/p>
以
观
察
到
蛋
带;
采用
白
条
快
速
色
脱
方法
20
染
色
分钟
<
/p>
左
可
到
右
即
观
察
蛋
白
条
观
最
的
带
察
清
蛋
。
到
晰
白
条
带
则
需染
色
更
脱
p>
长
色
时
间。
本
盒
染<
/p>
试
剂
中
的
色
液
和
液
改
不
脱
经
良
含
色
过
,
有
毒
醇
含
激
的
,
有<
/p>
性
甲
但
刺
气
味
的
乙
酸。
二
保
件:
存
<
/p>
条
室
温
保
存
少
有效。
,
至
一
年
注
项:
意
事
可
以
使
用
盒
当
p>
的
枪
或
大
培
头
适
小
养
皿
作
为
< br>染
脱
容器。
色
< br>和
色
的
本
液
性
轻
p>
染
呈
,
微
色
酸
有
腐
蚀
使
请
要
< br>性
用
作
,
时
必
防
护。
为
的
和
了
p>
您
安
全
健
康
穿
服
一
,
实
并
次
< br>请
验
戴
性
手
套
操
作。
三
使
明:
用
说
1.
常
色
规
p>
染
脱
色
方法:
p>
a.
电
泳
结
p>
束
取
放
量
后
凝
入
考
,
胶
适
马
-
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