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肿瘤个体化治疗检测技术指南(试行)

作者：高考题库网
来源：https://www.bjmy2z.cn/gaokao
2021-02-27 21:59
tags:

-

2021年2月27日发(作者：o2是什么意思)












肿瘤个体化治疗检测技术指南


（试行）


1





前言



肿瘤 的个体化治疗基因检测已在临床广泛应用，实现肿瘤个体化用药基因检


测标准化和规范化 ，是一项意义重大的紧迫任务。本指南从诊断项目的科学性、


医学实验室检测方法的准入 、


样本采集至检测报告发出的检测流程、


实验室质量

< p>
保证体系四个方面展开了相关论述，


使临床医生能够了解所开展检测项目的 临床


目的、


理解检测结果的临床意义及对治疗的作用；


医学实验室为患者或临床医护


人员提供及时、


准 确的检验报告，


并为其提供与报告相关的咨询服务。


检测技术< /p>


的标准化和实验室准入及质量保证对临床和医学实验室提出了具体的要求，


以最


大程度的保证检测结果的准确性。



本指南是参考现行相关的法规和标准以及当前认知水平下制定的，随着法


规和 标准的不断完善，


以及肿瘤个体化治疗靶点基因的不断发现，


本 技术规范相


关内容也将进行适时调整。



本指南起草单位：中国医学科学院肿瘤医院分子肿瘤学国家重点实验室、苏


州生物医药 创新中心，


经国家卫生计生委个体化医学检测技术专家委员会、


中国


抗癌协会相关专业委员会、


中华医学会检验医学分会、


中华医学会肿瘤学分会的


专家修订。



本指南起草人：詹启敏、曾益新、王珏、姬云、钱海利、李晓燕、孙石磊


2




目




录



1.


本指南使用范围


.................... .................................................. ................................


1



2.


简介


......................... .................................................. ...............................................


1



3.


标准术语和基因突变命名


................ .................................................. ....................


1



3.1


标准术语


.


.................................... .................................................. .................................................. ...


1



3.2


基因突变命名



.......... .................................................. .................................................. .....................


2



3.3


参考序列


< br>.


................................... .................................................. .................................................. ...


2



3.4


各类变异



.


.................................................. .................................................. ......................................


2



4.


分析前质量保证


.................... .................................................. ................................


5



4.1


样本类型及获取



......... .................................................. .................................................. ..................


5



4.2


采样质量的评价


< p>
............................................ .................................................. .................................


6



4.3


样本采集中的防污染



....... .................................................. .................................................. ............


6



4.4


样本运送和保存


< p>
............................................ .................................................. .................................


6



5.


分析中质量保证


....... .................................................. ...............................................


7



5.1


实验室设计要求



......... .................................................. .................................................. ..................


7



5.2


检测方法


< br>.


................................... .................................................. .................................................. ...


7



5.3 DNA


提取方法与质量控制


............... .................................................. ...........................................


1


3



5.4 RNA


提取方法与质量控制


............... .................................................. ...........................................


1


4



5.5


试剂的选择、储存及使用注意事项


............ .................................................. ...............................


1


4



5.6


核酸扩增质量控制



........ .................................................. .................................................. .............


1


5



5.7


设备维护和校准


< p>
............................................ .................................................. ...............................


1


5



5.8


人员培训



.


.................................................. .................................................. ....................................


1


5



5.9


方法的性能验证



......... .................................................. .................................................. ................


1


6



1




6.


分析后质量保证


.................... .................................................. ..............................


1


7



6.1


检测结果的记录



......... .................................................. .................................................. ................


1


7



6.2


失控结果的记录与分析



...... .................................................. .................................................. .......


1


7



6.3


报告及解释



.............................................. .................................................. .....................................


1


7



6.4


记录保留



.


.................................................. .................................................. ....................................


1


8



6.5


检测后基因咨询



......... .................................................. .................................................. ................


1


8



6.6


样本（及核酸）保留与处理


............... .................................................. ........................................


1


8



6.7


检测与临床数据收集与分析


............... .................................................. ........................................


1


9



7.


肿瘤个体化医学检测的质量保证


............. .................................................. .........


1


9



7.1


标准操作程序



............................................. .................................................. ..................................


1


9



7.2


质控品



.


. .................................................. .................................................. .......................................


1


9



7.3


室内质量控制



.......... .................................................. .................................................. ...................


2


0



7.4


室间质量评价



.......... .................................................. .................................................. ...................


2


0



7.5 PCR


污染控制



.

< br>............................................... .................................................. ...............................


2


1



附录< /p>


A


：常见的检测项目


........ .................................................. ...............................


2


2



A.1


基因突变检测项目


................... .................................................. .................................................. .


2


2



A.2


基因表达检测项目


.... .................................................. .................................................. ................


3


0



A.3


融合基因检测项目


..... .................................................. .................................................. ................


3


3



A.4


基因甲基化检测项目


.................. .................................................. ................................................


3


4



参考文献：


...................... .................................................. .........................................


3


7


2





1.


本指南使用范围



本指南由国家卫生计 生委个体化医学检测技术专家委员会制定，


是国家卫生


计生委个 体化医学检测指南的重要内容，


旨在为临床分子检测实验室进行肿瘤个

< br>体化用药基因的检测提供指导。


本指南的主要适用对象为开展个体化医学分子检< /p>


测的医疗机构临床分子检测实验室。



2.


简介



肿瘤个体化治疗以疾病靶点基因诊断信息为基础，


以循证医学研究结果为依


据，


为患者提供接受正确治疗方案的依据，


已经成为 现代医学发展的趋势。


临床


研究证实，通过检测肿瘤患者生物样 本中生物标志物的基因突变、基因


SNP


分

型、基因及其蛋白表达状态来预测药物疗效和评价预后，指导临床个体化治疗，


能够 提高疗效，减轻不良反应，促进医疗资源的合理利用。



3.


标准术语和基因突变命名



3.1


标准术语


1


）基因（


Gene


）

< p>
:


是遗传物质的最小功能单位，是指具有一定生物学意义的一段

< p>
DNA


。



2

< p>
）突变（


Mutation


）

：是细胞中


DNA


核苷酸序列发生了稳定的改变。



3


）融合基因（


Fusion gen e


）


：是指两个基因的全部或一部分的序列相互融合为一


个新的基因的过程。融合基因的表达产物为融合蛋白。



4


）基因表达（


Gene Expre ssion


）


：是基因中的


DNA


序列生产出蛋白质的过程。


步骤从


DNA< /p>


转录成


mRNA


开始，一直到对于蛋白质 进行翻译后修饰为止。



5


）基因扩增（


gene ampli fication


）


：为一特异蛋白质编码的基因的拷贝数选择 性


地增加而其他基因并未按比例增加的过程。



6


）


DNA


甲基化（


DNA


Methylation


）

< p>
：为


DNA


化学修饰的一种形式，将甲基添


加到


DNA


分子上，例如在胞嘧啶环的


5'


碳上。


DNA


甲 基化能在不改变


DNA


序


列的前提下， 将


DNA


甲基化状态遗传至下一代细胞或个体。



7


）聚合酶链反应（


PCR


）


：是一种体外扩增特异


DNA


片段的技术。利


用


DNA

在


体外摄氏高温时变性会变成单链，低温时引物与单链按碱基互补配对的原则结


合，


再调温度至


DNA

聚合酶最适反应温度，


DNA


聚合酶沿着磷酸到五碳糖


(5'-3')


的方向合成互补链。



1




8< /p>


）质控品：是含量或成分已知的处于与实际样本相同的基质中的特性明确的物


质，这种物质通常与其他杂质混在一起，专门用于质量控制目的的样本或溶液。



3.2


基因突变命名



人类基因组突变学会（


HGVS


）已建立系统的 基因突变命名方法。具体基因


突变命名方法可查阅网站


/mut nomen/


。


HGVS


基因


突变命名指南根据需求不断更新。本文以


2011


年


8


月更新版本为准。


< p>
当描述某一序列改变时，其前缀表明其参考序列类型。例如“


g.


”表示基因


组序列，“


c.

”表示


cDNA


序列，“


m.


”表示线粒体


DNA


序列，“


r.


”表示


RNA


序列，“


p.


”表示蛋白序列。在数据库中的收录号以及版本号应当在实 验记录报


告中列出，当两种突变在反式（


in


trans


）中检测到，则用方括号表示。例如，


CF


突变为杂合性突变（


508


号苯丙氨酸 缺失和


1303


号天冬酰胺被赖氨酸替代），

< br>则在


DNA


水平规范描述方式为


c.[1521_1523delCTT]+[3909C>G]


。


3.3


参考序列


< p>
美国国立生物技术信息中心


（


NCBI

< p>
）


收录的参考序列编码具有权威性及唯一


性。其中 前缀“


NM_


”表示为


mRNA


序列，“


NP_


”表示多肽序列，“


NG_


”表


示基因组序列。基因组参考序列应列 出完整基因序列，包括


5'


以及


3'< /p>


非编码区


（


UTR


）。当使用某段编码


DNA


参考序列描述突变时，应选择合适 的转录体，


且转录体的起始转录点应当明确，


例如选择最常见的 转录体，


或者是已知的最大


转录体，


或 者具有组织特异性的编辑转录体。


当某一参考序列具有多种转录方式

时，选择


NCBI


数据库里注释最全面的版本。

< p>


3.4


各类变异



3.4.1 DNA


序列变异术语规范



DNA


核苷酸用大写字母


A

< p>
（腺嘌呤）


、


C


（胞嘧啶 ）


、


G


（鸟嘌呤）以及


T


（胸


腺嘧啶）来表示。用正链来表示


DNA


序列。当


DNA


序列改 变时，以相应核苷


酸所在位置及相应字母来描述。


“

< p>
>


”符号表示“从某一变化至另一”


。在描述突< /p>


变方式时，数字、字母、箭头、上标以及下标之间不应出现空格。



2




3.4.2 RNA


序列变异术语规范



RNA


序列以小写字母


a


（腺嘌呤）


、


c


（胞嘧啶）


、


g


（鸟嘌呤）


、


u


（尿嘧啶）


进行描述。


RNA


序列改变描述方式与


DNA


相类似。具体术语可参阅


HGVS


网


站（


/mutnomen/


）


。



3.4.3


蛋白质序列变异术语规范



蛋白质序列改变通常以单个字母或三个字母（第一个字母大写）来描述。尽


管单个字母描述氨基酸明确无误，


但是由于三联密码子相对于其编码的氨基酸 存


在冗余性，具体给出发生突变的三联体密码子可以更清楚地描述氨基酸改变方


式。例如，用来描述氨基酸的


A


（丙氨酸）


、


C


（半胱氨酸）


、


G


（甘氨酸）以及


T


（苏氨酸）可能会与核苷酸字母


A


（腺嘌呤）


、


C


（胞嘧啶）


、


G


（鸟嘌呤）以及


T


（胸腺嘧啶）相混淆。



3.4.4


错义突变及无义变异术语规范



由于三联体密码子的简并性，< /p>


多个位点核苷酸的改变可能不影响最终氨基酸


序列。因此，应该分 别从


DNA


水平和氨基酸水平描述突变。从

DNA


水平对某


一突变位点的描述方式包括碱基位点，正常 碱基，


“


>


”符号，突变碱基。例如，


某一蛋白第


551


号氨基酸残基由


G


（甘氨酸）突变为


D

（天冬氨酸）


，从


DNA


水平描述 即


c.1652G>A


。


< p>
在氨基酸水平，


由于错义突变的产物以氨基酸残基位点以及表示氨基酸的单


字母或三联体密码子来描述。表示方法是野生型的氨基酸、位点、突变氨基酸，


三者之间不要有空格。例如，


551Asp


表示 该蛋白中


551


号甘氨酸残基（


G


）


被天冬氨酸残基


（


D


）


所代替。


无义突变表示方法与之 相类似。


需要指出的是


“


X

< p>
”


符号代表终止密码子。例如，


542X


表示


542


位点的甘氨酸残基被终止密码


子所代替。



3.4.5


缺失和插入术语规范



缺失和插入突变 分别用前缀“


del


”和“


ins


”来表示，并注明突变位点以及


碱基。例如，


c.441delA


表示在该


DNA


序列中


441


号位点发生


A

< p>
碱基缺失。


c.241_243delATC


表示 在该


DNA


序列中从


241

< p>
号到


243


号缺失


ATC


三个碱基。



在蛋白水平，上述突变描 述方式为


24del


，表示该蛋白质中第


24


号的异


亮氨酸残基发生缺失。


“


indels


”则表示该段序列缺失的同时有片段插入。例如，


3




23 4_239delAATTCGinsTA


（或者


234_23 9delinsTA


）


表示该


DNA< /p>


序列


234


至


2 39


号位点缺失


AATTCG


六个碱基 ，同时该段位点被新插入的


TA


碱基所替代。

< br>


3.4.6


移码突变术语规范



移码突变用“


fs


”符号来表示。


“

fs*#


”则用于进一步描述突变类型。例如，


62Pro fs*21


表示该蛋白发生移码突变，第


62

< br>号氨基酸由组氨酸突变为脯氨


酸并产生新的阅读框架，


终 止于第


62


号密码子下游


21


号密码子处。


该突变也可


简要描述为

< p>
62fs


，即该蛋白从第


62

号密码子发生移码突变。



3.4.7


碱基重复序列



HGVS


推荐，核苷酸重复序列基因多态性描述时通常以一个重复序列为单


元，后面加 上“


[


重复的次数


]

< br>”


，如


CGG[55]


。当重复 序列的次数在一个范围之


内时，需要在小括号“


（）

< p>
”中标注出可能的最少的和最高的重复次数，如某个人


HTT


基因


中


发现


有


12


个


和


15


个


CAG


重


复


，


基因


水


平的


表示


如


下


：


c.52CAG[12]+[15]


，蛋白水平则表示为：

18[12]+[15]


。


HTT


基因的重复序列


范围则描述为：


c.52CAG(27_35)


或



18(27_35)


。



3.4.8


遗传药理学基因型术语规范



最广泛使 用的命名法描述遗传药理学基因型不同于其他遗传学基因检测，


例


如代谢相关基因细胞色素


p450


家族，人类细胞色素


P450


（


CYP


） 等位基因命名


委员会（



）推荐用“


*


”命名，见图


1


。在该系统中，最


常见的等位基因被指定为“


* 1


”


。



< /p>


图


1.


细胞色素


P4502D6


等位基因命名规范





3.4.9


其他



对于更复杂的突变，可参考


HGVS


（


/mutnomen

< p>
）建议的


命名规则，解决其他复杂的变异的命名。



4




4.


分析前质量保证



4.1


样本类型及获取



4.1.1


新鲜组织


(


包括手术和活检组织


)


肿瘤新鲜冷冻材料可提取出最高品质的


DNA< /p>


、


RNA


。在手术现场取样的情


况也比较多，


但需要在显微镜下确认肿瘤细胞含量。

周围炎症严重的肿瘤、


黏液


产生过高的肿瘤、


病变中心广泛纤维化的肿瘤细胞不能采集，


以免产生假阴性结


果。切割后取其中一半，并利用另一半切面制作组织标本，然后进行确认。


< /p>


手术切除的组织样本理想的保存方法是迅速置于液氮中，


然后保存 于液氮罐


或


-80


℃冰箱，这一过程应 在手术样本离体后


30


分钟内完成。由于组织样本通常


需先进行病理学分析，


在分析完成后应尽早将组织样本置于稳定剂中，< /p>


避免核酸


降解。



4.1.2


石蜡包埋组织（


formalin-fixed paraffin-embedded


，


FFPE


）



10%


中性福尔马林固 定手术切除样本，按病理学操作规范进行取材。



制作石蜡切片 时，切取


5


片连续切片，其中


1


片进行


HE


染色，确认肿瘤细


胞的含量。在高灵敏度检测方法中，可考虑使用活检标本。


< br>DNA


容易受固定的影响，长时间（


1

< br>周以上）浸泡在福尔马林中的样本的


DNA


会被片段化， 不能检出突变。活检材料的固定时间一般是


24


小时，对于穿< /p>


刺等活检样本，固定时间控制在


6~24


小时为佳。



4.1.3


胸腹水等细胞学样本



用胸腹水中的肿瘤细胞用于基因检测时，


必须确认肿瘤细胞，


穿刺获得胸腹


水样本提交给细胞病理检查之后，剩余液体冷藏


/


冷冻保存，也可在含有细胞成


分的离心沉淀中 加入含有蛋白质变性剂的缓冲液（


AL


缓冲液，


Qiagen


公司）等


室温保存。

由于细胞学样本的肿瘤细胞含量较低，


因此必须使用高灵敏度检测方


法。



4.1.4


血浆样本



循环


DNA(circulating free DNA


，


cfDNA)


是存在于血浆中的游离


DNA


，


肿瘤


来源 的


DNA


占血浆游离


DNA

< p>
的比例在不同肿瘤及病例中相差悬殊


（


0.01~ 93%


）


，


从而限制了外周血在肿瘤分 子检测时的应用。


目前已有多篇文献证实可利用从血


浆游离


DNA


检出突变，但需要使用


ARMS


法等灵敏度非常高的检测方法。



5




采集外周血提取血浆游离


DNA


进行检测，取样时应使用一次性密闭


ED TA


抗凝真空采血管，采集


6~10ml


全血，冷藏运输，


6


小时内分离血浆，提取游离


DNA


，保存到


-80


℃冰 箱中，并避免反复冻融。如外周血需长时间运输，建议用


商品化的游离

< br>DNA


样本保存管，在常温条件下，


cfDNA


在全血中可稳定保存


7


天。



4.2


采样质量的评价



肿瘤细胞是否存在，


是开展肿瘤个体化治疗基因检测的重要前提。


如果要确


认肿瘤细胞存在，与病理诊断医生密切合作是非常必要的。


< p>
采样评价内容包括：


细胞组成、


肿瘤细胞的数量，


是否按照要求进行处理与


运输。评价方法包括肉眼观察、显微镜 下观察和浓度分析等。



肿瘤组织切片等应经病理医师审阅，取 一张切片


HE


染色后显微镜下观察，


确 保肿瘤细胞存在，并记录肿瘤组织含量，标注肿瘤细胞密集区域。



4.3


样本采集中的防污染



样本采集最好采用一次性材料，不用处理便可直接使用；



制备不同患者病理切片样本时，


需更换新刀片，

并清除操作器皿上先前样本


的残留；


采集中要特别注意防止污染，防止混入操作者的毛发、表皮细胞、痰液等；



如使用玻璃器皿，必须经高压灭菌，以使可能存在的


DNase


失活；



如提取


RN A


样品，必须采用


RNase


抑制剂措 施和无


RNase


材料。



4.4


样本运送和保存



原则上按照《个体化医学检测质量保证指南》要求进行。



实验室应建立详细的样本运送标准操作规程（


SOP


）


，对临床医生提供样本


采集手册，

< br>要求物流人员填写相关运送记录表，


确保运送过程中样本的安全性和


过程的可控性。



需要转送的样本：用于

< p>
RNA


检测的样本，如果未经稳定化处理，则必须速


冻后，放在干冰中运送。



经过适当稳定化处理的样本可在常 温下运送，如用于


DNA


扩增检测的


E DTA


抗凝全血样本及用于


RNA


扩增 检测的经稳定化处理的样本。



6




5.


分析中质量保证



5.1


实验室设计要求


< p>
原则上按照《个体化医学检测质量保证指南》要求进行。在符合国家卫生


计 生委要求的个体化医学检测实验室和通过审核验收的临床基因扩增检验实验


室完成。



5.2


检测方法



5.2.1 Sanger


测序法



5.2.1.1


技术原理


< p>
Sanger


测序法即双脱氧链终止法


（


Chain Termination Method


）


，


利用一种


DNA


聚合酶来延 伸结合在待定序列模板上的引物。直到掺入一种链终止核苷酸为止。


每一次序列测定由一 套四个单独的反应构成，


每个反应含有所有四种脱氧核苷酸


三磷 酸


(dNTP)


，并混入限量的一种不同的双脱氧核苷三磷酸< /p>


(ddNTP)


。由于


ddNTP


缺乏延伸所需要的


3-OH


基团，使延长的寡 聚核苷酸选择性地在


G


、


A

< p>
、


T


或


C


处终止。终止点由反应中相应的双脱氧而定。每一种


dNTPs


和


ddNTPs


的相对浓度可以调整，


使反应得到一组长几百至几千碱基的链终止产物。


它们具


有共同的起始点，


但终止在不同的的核苷酸上，


可通过高分辨 率变性凝胶电泳分


离大小不同的片段，凝胶处理后可用


X-


光胶片放射自显影或非同位素标记进行


检测。



5.2.1.2


技术特点



该方法是


DNA


序列分析的经典方法，最直接 的、可检测已知和未知突变的


一种方法。由于该方法可直接读取


DNA


的序列，因此被认为是基因分型的金标


准。



主要优点：


测序长度较长，


可发现新的变异位点，


包括一些新的少见的突变


形式及突变的 确切类型，如点突变、片段缺失。



局限性：

< br>灵敏度不高，


突变等位基因需要超过


20%


才能检出。


对样本中肿瘤


细胞的含量和比例要求较高 ，


一般要求肿瘤细胞含量不低于


50%


，


如果肿瘤细胞


比例低于


50%


，则假阴性出现的概率会显著增加；不适用于活检或细胞学样本。


< /p>


5.2.2


焦磷酸测序法（


Pyrose quencing


）



5.2.2.1


技术原理



7




焦磷 酸测序技术是由


4


种酶催化的同一反应体系中的酶级联化学发光 反应。


当测序引物与模板


DNA


退火后 ，在


DNA


聚合酶、


ATP

< p>
硫酸化酶、荧光素酶和


三磷酸腺苷双磷酸酶等


4< /p>


种不同酶的协同作用下，


将引物上每一个


dNTP


聚合时


释放的焦磷酸基团（


P Pi


）与一次荧光信号的释放偶联起来，通过检测荧光的释


放和 强度，达到实时测定


DNA


序列和定量分析序列变化的目的。< /p>



5.2.2.2


技术特点


< p>
焦磷酸测序技术是一种新型的酶联级联测序技术，其重复性和精确性可与


S anger


测序相媲美，


而测序速度则大大提高，


非常适合对已知的短序列进行重测


序分析。



主要优点：检测灵敏度为


10%


，相对


Sanger


测序法高，对体细胞突变和甲


基 化等可实现定量检测；分型准确可靠，通量较高，实验设计灵活，可发现新的


突变或遗传 变异。



局限性：测序长度较短，不能对长片段进行分析。检测 灵敏度中等，难以检


出低于


10%


的突 变。不适用于活检或细胞学样本。



5.2.3


新一代测序



（


next generation sequencing< /p>


，


NGS


）



5.2.3.1


技术原理




NGS


又称大规模平行测序（


MPS


）


，包含多种可以一次性产生大量数字 化基


因序列的测序技术，是继


Sanger

测序的革命性进步，采用平行测序的理念，能


够同时对上百万甚至数十亿个


DNA


分子进行测序，实现了大规模、高通量测序


的目标。不同厂家的产品测序原理不同，主要分为边合成边测序（


Sequencin g by


synthesis


，


SB S


）


、基于


“DNA

< br>簇


”


和


“


可逆性末端终结（


Reversible Terminator

）大


规模平行测序、



4


色荧光标记寡核苷酸的连续连接反应测序和半导体芯片测序。



5.2.3.2


技术特点


< p>
高通量测序技术不仅可以进行大规模基因组测序，还可用于基因表达分析、


非编码小分子


RNA


的鉴定、


转录因子 靶基因的筛选和


DNA


甲基化等相关研究。


主要优点：高通量测序技术有三大优点是传统


Sange r


测序法所不具备的。第


一，它利用芯片进行测序，可以在数百 万个点上同时阅读测序。第二，高通量测


序技术有定量功能，


样 品中


DNA


被测序的次数反映了样品中这种

DNA


的丰度。


8




第三、利用传统


Sanger


测序法完成的人类基因组计划总计耗资


27


亿 美元，而现


在利用高通量测序技术进行人类基因组测序，测序成本只需

< br>1


千美金。



局限性：检测灵敏 度和测序深度相关，一般来说，


NGS


在肿瘤体细胞突变检


测时，


检测灵敏度为


10%


；


已知的与肿瘤相关驱动基因数量有限，


疾病表型和基


因型的关系还有赖于生物信息的解读，目前


NGS


应用于肿瘤细胞突变检测的标


准化和质量控制尚未形成共识。



5.2.4


扩增阻滞突变系统



（


ARMS


）


-PC R


法



5.2.4.1


技术原理



扩增阻碍突变系统（


amplification refractory mutation system, ARMS


）是

< p>
PCR


技术应用的发展，也称等位基因特性


PCR


（


allele-specific PCR,AS-PCR< /p>


）等，用


于对已知突变基因进行检测。该法通过设计两个


5`


端引物，一个与正常


DNA


互


补，一个与突变


DNA


互补 ，对于纯合性突变，分别加入这两种引物及


3`


端引物


进行两个平行


PCR


，只有与突变


DNA


完互补的引物才可延伸并得到


PCR


扩增


产物。如果错配位于引物的


3`

< p>
端则导致


PCR


不能延伸。



5.2.4.2


技术特点



ARMS- PCR


是目前实验室常用的基因突变检测方法。



主要优点：


ARMS-PCR


法检测灵 敏度高，


可检测肿瘤细胞中突变比例为


1%

甚至更低的突变基因。



局限性：只能检测已知的突变类型 ，不能发现一些新的、未知的突变；如果


检测的突变位点或类型较多，

< br>则随着引物数目增加出现非特异性结合的概率也相


应增加；当检测位点较多时，对


DNA


样本量的需求增加。



5.2.5


高分辨率熔解曲线（


HR M


）法



5.2.5.1


技术原理



高分辨率熔解曲线


（


high- resolution melting


，


HRM


）


是一种基于


PCR


新型技


术，用于检测基因变异包括未知的基因变异、单核苷酸多态性以及基因甲基化。


HRM


是基于在加热过程中双链变性为单链的原则。

DNA


双链体的熔解温度差异


反应了基因的变异。双链


DNA


片段在其特定的温度熔解，熔解的温度由片段的


CG


含量、序列组成、长度以及一个和多个杂合碱基决定。用


DNA


嵌合的染料


可以看到任何双链片段的熔解峰图，


在有荧光嵌合染料的情况下


PCR


扩增 片段，


9




扩增后的产物通过一个快速的可控的加热处理开始熔解。


荧光水平在升温的过程


中实时监测，染料随着双链


DNA


的熔解，荧 光信号逐渐减少。



5.2.5.2


技术特点


< p>
由于


HRM


分析不受碱基突变位点和种类的限制， 可用于突变扫描、基因分


型、序列匹配、


DNA


甲基化等方面的研究。



主要优点：检测灵敏度


1%


，特异性高，重复性好；封闭体系，减少污染的

< br>可能性；扩增和检测同时进行，无需


PCR


后进行处理。




局限性：


通过熔解曲线的图不能判断某一特异性的变异体，


下游分析中检测


需要有测序等补充。



5.2.6


数字


PCR


（


Digital PCR


）



5.2.6.1


技术原理


< p>
数字


PCR


是一种核酸分子绝对定量技术。相较于


qPCR


，数字


PCR


能够直


接数出


DNA


分子的个 数，对起始样品绝对定量。通过将一个样本分成几万到几


百万份，分配到不同的反应单元 ，每个单元包含一个或多个拷贝的目标分子


( DNA


模板


)


，在每个反应单元中分别对目标分子进行


PCR


扩增，扩增结束后


对各个反应单元的荧光信号进行统计学分析。


数字


PCR


技术不断发展，


Bio-Rad


、


LIFE Technologies


、


Fluidigm


及


RainDance


等厂家相继推出技术较为成熟的数字


PC R


产品。



5.2.6.2


技术特点


< p>
数字


PCR


目前的应用包括：稀有等位基因检测、 基因表达绝对定量、核酸


标准品绝对定量、二代测序文库绝对定量等。

< br>


主要优点：灵敏度可达


0.001~0.0001%< /p>


，高特异性，可检测复杂背景下的靶


标序列；可高度耐受


PCR


反应抑制剂；不必依赖对照品或标准品，可对目标拷


贝数直接进行精确的鉴定，


分析微小的浓度差异；


实 验数据分析便捷，


每个微滴


的检测结果以阴性、阳性判读，数据 分析自动化；可统计突变率，通过统计分析


可得出靶点的突变率。



局限性：数字


PCR


仪通量较低， 目前通常能检测的信号为


FAM


和


HE X


。


一般单个反应


2

< br>重反应效果最佳；


数字


PCR


优 点是灵敏度高，


但是对于


DNA


浓


度大的样本处理就没有优势，


而且核酸浓度高时，

< br>每个微滴里面包含的拷贝数不


10




符合泊松分布；数字


PCR


虽然不依赖标准曲线，但是每次反应之间存在差异，


短期内不能代替


qPCR


，也不能代替其他金标准而作为首选方法。


QX200


等数字


PCR


仪目 前仅用于科研用途，数字


PCR


走向临床检验还需要一段时间。



5.2.7


荧光原位杂交（


FISH


）



5.2.7.1


技术原理



荧光原位杂交


(fluorescence


in


situ


hybridization, FISH)


是通过荧光标记的


DNA


探针与细胞核内的


DNA


靶序列杂交，并在荧光显微镜下观察分析其结果的一种


分子细胞遗传学 技术。它的基本原理是：如果被检测的染色体或


DNA


纤维切片


上的靶


DNA


与所用的核酸探针是同源 互补的，二者经变性


-


退火


-


复性，即可形


成靶


DNA


与核酸探针的杂交体。将核酸探针的某一种核苷酸标记上报告分子如


生物素、


地高辛，


可利用该报告分子与荧光素标记的特异亲和素之间的免疫化学< /p>


反应，经荧光检测体系在镜下对待测


DNA


进行定性、定量或相对定位分析。



5.2.7.2


技术特点


< p>
FISH


主要可对基因缺失、基因融合、基因扩增进行检测。



主要优点：


可多种荧光标记，

显示


DNA


片段及基因之间的相对位置与方向，

< p>
空间定位精确；灵敏、特异性好，可同时分析分裂期和间期的多个细胞，并进行

定量；可以检测隐匿或微小的染色体畸变及复杂核型。



局 限性：


FISH


检测对操作和判读技术要求较高，诊断医师必须 经过严格的


FISH


操作和结果判读培训，

只有经


FISH


操作经验丰富的医师判定的结果才具有


可靠性；目前


FISH


检测的成本昂贵、通 量低。



5.2.8


免疫组化（


IHC


）



5.2.8.1


技术原理


< p>
免疫组化


（


Immunohistochemis try


，


IHC


）

分析利用抗体和抗原之间的结合的


高度特异性，


借助于组织 化学的方法将抗原抗体结合的部位和强度显示出来，


以


其达到对 组织或细胞中的相应抗原进行定性、定位或定量的研究。



5.2.8.2


技术特点


< p>
IHC


作为筛查工具优于


FISH


，具有经济快捷的优点，尤其适用于大量样本


的检测分析。影响


IHC


结果的因素主要包括抗体的选择、检测前组织的固定，

< br>观察者解释方面的差别等。



11




5.2.9


荧光定量逆转录


PCR(Q-RT-PCR)


5.2.9.1


技术原理


< p>
逆


转


录


PCR

< p>
（


reverse


transcription


PCR


）


或


者


称


反


转


录


PCR(reverse


transcription-PCR, RT-PCR)


，


是聚合酶链式反应


( PCR)


的一种广泛应用的变形。


由


一 条


RNA


单链转录为互补


DNA(cD NA)


称作


“逆转录”


，


由依赖


RNA


的


DNA


聚


合酶（逆转录酶）来完成。随后，


DNA


的另一条链通过脱氧核苷酸引物和依赖


DNA

< br>的


DNA


聚合酶完成，随每个循环倍增，即通常的


PCR


。原先的


RNA


模板


被


RNA


酶


H


降解，留下互补


DNA


。



5.2.9.2


技术特点


< p>
荧光定量


PCR


是检测拷贝数变化的一种快速且经 济的技术方法，该方法技


术可用于


RNA


表达水平检测该技术主要优点是检测快速、通量高、灵敏度好，


主要不足是对肿瘤组织 提取


RNA


的质量要求较高，在检测基因表达量时判读标


准尚未统一。


FISH


、

IHC


和


Q-RT-PCR


三种方 法在检测


ALK


基因重排时的优缺


点分 析见表


1


。



表


1


：


FISH

、


IHC


和


Q-RT-PCR


检测


ALK


基因重排的优缺点比较




检测对象



特异性



发现的融合类型



通量



费用



IHC


蛋白



+


已知、未知



++


+


FISH


DNA


+


已知、未知



+


++++


Q-RT-PCR


RNA


++++


已知



++++


+++


5.2.3


检测方法选择策略



实验室应优选国际 和国内


“金标准”


的检测方法，


同类方 法中优先选择结果


稳定性、


重复性好、


特异性高的技术，


同时也应考虑样本量，


检测项目的多少等，< /p>


综合选择合适的方法。



由于肿瘤组织的 异质性，检测的组织样本中混有大量正常组织、石蜡样本提


取的


DNA


质量和数量有限，就检测灵敏度而言，目前


ARMS-P CR>


焦磷酸测


序


>Sanger


测序。



12




在检测肿瘤基因突变时，不能一味追求检测方法的灵敏度，灵 敏度高的检测


方法对整个实验过程中的质控要求更为严格，需防止因污染而产生假阳性。



在肿瘤靶基因表达检测时，由于肿瘤样本的不可再生性，需谨 慎选择使用的


方法，


如选用荧光定量


P CR


要求提取的总


RNA


量达


1?


g


以上，


如果肿瘤 组织过小，


提取的


RNA


量可能达不到 检测要求，此时应考虑选用对样本量要求低的检测方


法。



5.2.4


检测项目



本指南根据检测靶分子（


DNA


或

< br>RNA


）类型及基因表达调控机制类型的不


同，将肿瘤个 体化治疗检测项目分为基因突变、基因表达、融合基因、基因甲基


化检测四个类型。


所述检测项目均为目前在肿瘤临床诊疗中，


经过严格的循证医


学实验，且具有明确的临床应用价值，详见附录


1

。实验室在开展肿瘤个体化检


测项目时，


应评估所开展的检 测项目的科学性，


并遵循实验室的质量管理相关规


定。



5.3 DNA


提取方法与质量控制



DNA< /p>


提取之前的病理质量控制非常重要，它决定了最终检测结果的可靠性。

样本进行检测前均先行常规病理检查和诊断


（


HE


染色）


，


必须经有经验的病理医


师确定肿瘤细胞的百分比


(


肿瘤细胞／整张切片所有细 胞，必要时应采取富集肿


瘤细胞的方法，


如手工刮取或显微切割 法。


选取以肿瘤细胞为主的、


没有明显的


坏死、黏液和炎性改变的组织进行检测。



肿瘤细胞比例尚无 统一标准，理想情况下，石蜡样本中肿瘤细胞的比例不应


低于


5 0%


，新鲜样本不低于


25%


，对于< /p>


ARMS


等敏感性较高的方法，肿瘤细胞


的含量和比例可以低一些。具体视所采用的


DNA


提取方法和突 变检测方法的敏


感度等而定。



对于新 鲜和冻存的手术组织样本，可采用常规的商品化


DNA


提取试剂 盒。


对于活检样本，推荐使用能提取石蜡包埋组织微量


DNA< /p>


的试剂盒。对于商品化


核酸提取试剂盒，


临床实验室在使用前，


必须对其核酸提取纯度和效率进行评价。



纯化的靶核酸的完整性可使用凝胶电泳将样本的核酸提取物与核酸标准品比较

< p>
测定。




13




核酸提取的产率：


可在


A


260


读数测定，


DNA


可溶于


TE


溶液中，建议浓度控制


在


50~100ng/ul


，总量


20~40 ?


g


或以上。



核酸纯度：


可通过提取物


A


260< /p>


/A


280


比率判定，

< br>DNA


的比值为


1.8


，


RNA


的比值


为


2. 0


。若


DNA


比值高于


1.8


，说明制剂中


RNA


尚 未除尽。


RNA


、


DNA


溶液中


含有酚和蛋白质将导致比值降低。



5.4 RNA


提取方法与质量控制



RNA


提取常比较困难，尤其是保存年限较长的肿瘤组织，


RNA


降解非常严


重。造成


RNA


降解的原因有两个方面：


RNA


核糖残基的


2’


和


3’


位置带有羟基，


易被水解；生物体内和外部环境中存在大量

< p>
RNA


酶，并且


RNA


酶 不易失活，


高温后仍然能够正确折叠恢复活性。因此从样本的储存、

RNA


的提取及保存，


都需要格外小心，防范


RNase


对


RNA


的降解 作用。



RNA


提取的经典方法是胍盐 提取结合酚


-


氯仿抽提，石蜡样本或活检样本可


使用商品化


RNA


提取试剂盒纯化。细胞或组织的彻底 匀浆是


RNA


提取过程中


关键的步骤， 它能够防止


RNA


的损失和降解。匀浆的方法应根据细胞或组织 的


类型来选择。



核酸提取的产率：< /p>


RNA


可溶于无


RNase


的纯水中，


建议浓度控制在


100ng/ul


以上，总量达


30?


g


以上。



纯化后的


RNA

< p>
应测定


OD260/OD280


比值，

< p>
RNA


：


1.7


＜


OD260/OD280


＜


2.0

< p>
（＜


1.7


时表明有蛋白质或酚污染；＞


2.0


时表明可能有异硫氰酸残存）


，进行琼< /p>


脂糖凝胶电泳观察有无


DNA


污染和


RNA


的完整程度。




5.5


试剂的选择、储存及使用注意事项



临 床检测试剂必须为


CFDA


批准的试剂，或具有严格标准操作规 程（


SOP


）


的自配试剂（

< p>
LDT


）


。


< p>
所采用的测定方法特异性好，灵敏度、准确度、精密度符合国家卫生计生委


临床检验中心、


IFCC


、


WHO


等推荐的方法性能。所用标准品或标准参考物符合


国家卫生计生委临 床检验中心推荐的标准和要求。



14




5.6


核酸扩增质量控制



临床


PCR


检测方法不但要求特异性好、灵敏度高、还要求具有高的可重复


性、准确性，尽量降低假阳性、假阴性和非特异性扩增。临床样本扩增时，经常


出现假阳性和假阴性，导致检测结果得出错误结论，有时可造成严重后果。


< /p>


在核酸提取中，应至少带有


1


份已知弱阳 性质控样本。其最后的检测结果，


应是核酸提取和扩增检测有效性的综合反映。


同时，


还应至少带一份已知阴性质


控样本，扩增 测定的结果可以判断核酸提取过程中是否发生污染。



如靶核酸 为


DNA


，


为判断

DNA


扩增的有效性，


可使用


1< /p>


份已制备好的弱阳


性靶


DNA

< p>
样本，


直接与靶核酸同时扩增检测。


如靶核酸为< /p>


RNA


，


则除了可用上

< br>述弱阳性


cDNA


判断


DNA< /p>


扩增有效性外，还可用已制备好的弱阳性


RNA

< br>质控


来判断反转录的有效性。


另外，

须设立阴性对照样品。


阴性对照样品检测为阴性


时，


表明试验全部过程的试剂没有受到核酸污染。


在阴性对照样品和阳性对 照样


品检测结果成立的前提下，才能对检测样品扩增结果进行判定。


5.7


设备维护和校准



实验室仪器的保养与维护是实验室实验技术员的重要组成部分，


仪器 的保养


与维护关系到仪器的适用率、数据的准确率。



仪器设备安装及技术性能验收需由项目负责人、


仪器设备使用人、


实验室技


术人员共同完成，


验收内容按采购合 同中技术需求部分以服务协议书的要求逐项


进行，并且建立仪器设备档案。



仪器设备应定期开展校准计量，未经计量检定、计量检定不合格或未验收的


对测试有重要影响的仪器设备不得投入使用。



实验室日常工作中，应重视仪器设备的清洁及维护，做到日维护、周维护、


月维 护，并及时记录。



5.8


人员培训



检测人员应该有相关的教育 背景、相应的工作经验，接受过专业培训。培


训主要有内部和外部培训，


内部培训包括所使用的试剂方法原理、


仪器设备操作


维 护及校准、


质量控制等，


外部培训包括国家卫生计生委临床检验 中心和国家卫


生计生委个体化医学检测培训基地等机构组织开展的各种技术培训。



15




5.9


方法的性能验证


< p>
方法学引进初期需对检测系统测定项目各参数的实验或评估性验证，包括精


密度、


准确度、


线性范围、


临床可报告 范围、


特异性、


检测下限、


抗干扰能力 等。



所有项目的方法验证应形成详细的资料备存，

< p>
资料需详细描述方法验证的目


的、过程、检测结果、分析判断及验证结论。 验证的结果及结论须经实验室负责


人签字后才能用于临床检测。


根据项目的特性，


一些方法验证指标不需进行或未


进行时，需在 报告中书面解释原因。推荐用打印的文稿并在专用文件夹保存。



具体的性能验证方法，如使用的是经


CFDA


批准的试剂，可 参照试剂盒说明


书上相应的性能指标部分进行验证，


看是否能在 其实验室内复现说明书所显示的


上述性能指标。如为自制试剂或自建方法，则参考


LDT


技术指南进行性能评价，


建立上述性能 指标。以下方法可供参考。



【准确度】



1


）参加国家卫生计生委临检中心组织的室间质评，从室间质评统计结果评价实


验室检测 结果的偏倚或符合情况，从而评价和验证实验室检测结果的准确性。


< br>2


）方法比较实验：当引进新方法与原有方法进行比较时，最少样本数为


20


例，


用两种方法同时测定同样的样品。


如结果有不符合时，


应采用第三种方法或试剂


进行确认。



3


）检测已知值的标准 物质，对于样本来源存在问题的检测方法，可以对已知值


的样本稀释成不同浓度再检测， 以评估其准确度。



【灵敏度】



1


）分析灵敏度：就是确定检测方法的检测下限：将一份已知定值的 标准品，用


野生型的基因组稀释突变型基因组，


设定不同的突变 含量，


一直稀释到检测下限


以下为止，


平行检测


3


管，


3

管全部检出且其线性∣


r


∣≥


0. 98


的最低稀释浓度即


为该方法的检测下限。

< br>（可根据实际情况在最低稀释浓度附近进行


10


倍以下的 稀


释）



2


） 临床灵敏度：主要是验证方法的假阴性率。从三甲医院或专业权威检测机构


收集


20~50


例样本，进行检测分析，其灵敏度应满足临床检测要求，灵敏 度


=[TB/(TB+FN)]


×


10 0


（


TB=true positive


、


FN=false negative


）


；有


CFDA


批 文的检


16


-


-


-


-


-


-


-


-



本文更新与2021-02-27 21:59，由作者提供，不代表本网站立场，转载请注明出处：https://www.bjmy2z.cn/gaokao/676363.html

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