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GST_pull_down试验方法(自己总结)

作者:高考题库网
来源:https://www.bjmy2z.cn/gaokao
2021-02-10 21:25
tags:

-

2021年2月10日发(作者:球场)



蛋白的表达和纯化




12.1 GST


蛋白的表达




1)


将表达


GST


融合蛋白的质粒转入


BL21


大肠杆菌菌株中。




2)


挑单克隆于


3ml LA(LB+Amp)

培养基中,37℃摇菌过夜,获得种子液。




3)


将种子液稀释于


50ml2XYTA(YTG+Amp)


培养基中,使起始

< br>OD600



0.1





4)


28℃,2 20rpm


摇菌培养


2


小时。




5)


加入


50


μ


l 100mM IPTG,16


~27℃摇菌培养


1



8


小时。




6)


收菌,将菌液倒入大离心管,


2



/50ml


菌液,4℃ 5krpmx5min


离心,弃


上清。




7)


加入


10ml PBS/


管,重悬细胞


,5krpm


离心


5min

< p>
,弃上清。




8)


加入


2ml


PBS/


管,重悬细胞。转移至


5ml


离心管。




9)


超声破壁



破壁前,在细胞悬液中加< /p>


20


μ


l 10mg/ml PMSF, 80


μ


l


蛋白酶抑制剂


(100x)




破壁参数:


Frequency:100



200 w


60s



pause


20s run 40s,5cycles


破至菌


体由浑浊变为澄清。




100


μ


l 20%


TritonX



100


,冰上放置


30min


< br>



10)


将裂解液分入


1.5ml


离心管中,4℃离心


12krp m×10min,取上清。




11)


吸取少量上清


,加入蛋白电


泳上样缓冲 液


,在沸水中煮


3min


。离心



12krpm,1min



,取上清作


SDS- PAGE


电泳,检测表达情况。




12.2


准备


50%GST Sepharose 4Bslurry



1)


将原


75%Glutathione Sepharose 4 B



slurry


弹至混匀。




2)



677


μ


l


原液


/


管,


3krpm


离 心


5min


,弃上清。




3)



500


μ


l


PBS


,颠倒混匀,


3krpm


离心


5min


,弃上清。反复


5


次。




4)



500


μ


l


PBS


,颠倒混匀,配成


50%Glu tathione Sepharose 4B


备用。




12.3 GST


融合蛋白的纯化




1)


在新鲜制备的细胞裂解液上清 中加入


20


μ


l


50%Glutathione


Sepharose


4B



4℃,摇床上摇,反应


30min



60min


。< /p>




2)


3k rpm


离心


5min


,弃上清。该


Sepahrose


上即结合了


GST


融合蛋白,


(如果


仅仅是做纯化效果检测或 者蛋白表达量很高,


可以只接合一次,


如果要结合更多


则接着往下做)




3)


在管中加入离心后的


1.5ml


新鲜制备的细胞裂解液的上清,4℃,反应

< br>30min



60min



3krpm


离心


5min

< br>,


弃上清。


重复该步骤多次,


就 可以使


Sepahrose


上结合


6< /p>



10ml


裂解液中的


GST


融合蛋白。




4)


在管中加入预冷的

< p>
200


μ


l


PBS


(沿壁加入,小心勿剧烈,以免打断珠子与


蛋白的联接)

< p>
,


轻晃悬浮珠子,



Se pharose


洗涤一次,


3krpm


离心


3min



弃上


清。




5)


反复三次(最后一次以小枪吸净珠子表面水膜,其余几次可以中枪吸,尽


量吸 净但不吸走珠子)


,即获得结合有


GST


融合蛋白的


Sepharose





6)


如果用于检测,在

< p>
Sepharose


加入


15


20


μ


l

1×蛋白电泳上样缓冲液,在


沸水浴中煮


3min



12krpm


离心


1 min


,取上清作


SDS- PAGE


电泳。




7)


如果用于

pull



down


测试,参见< /p>


pull



down


步骤。




14.


体外蛋白质结合分析(


GST- pull down





1)


将结合有

GST


融合蛋白的


Glutathione Sepharose 4B


悬浮在


500


μ


lNETN


缓冲液中加入


20



30


μ


l


含有其他蛋白的溶液,


例如


pET

< p>
发酵的产物


,


细胞表达的


产物等,同时采用结合有


GST


空蛋白的


Glutathione Sepharose 4B


平行操作作


为对照。




2)


在水平摇床上,


4


晃动


4



8


小时。




3)


离心(


3.6krpm,2min



。吸去上清,注意不要扰动底层 的


Sepharose.



4) < /p>


加入


200


μ


l


缓冲液


H



S epharose


进行洗涤。注意加入缓冲液


H


时要贴壁


加,不要直接冲击


Sepharose


,随后轻柔晃动,使


Sepharose


重悬 即可。




5)

低速离心(


3krpm



2min


)吸去上清,注意不要扰动底层的


Sepharose





6)


重复步骤的洗涤


2



3


次。




7)


吸干


Sepharose


上方的水层后 ,加入


20



30

μ


l


1×蛋白电泳上样缓冲液,


沸水浴


4min


,冻存于-20℃。




8)



SDS-PAGE



Western


检测另一个蛋白。



GST


试验流程(梗概)





1



Glutathione


琼脂糖珠预处理。




2



GS T


融合蛋白挂柱:取适量


GST-


融合 蛋白与


10


μ


l


已经处理过的


beads


置于


1.5 ml


离心管中,



4℃, 摇床孵育过夜。




3




孵育过夜的蛋白质与


beads


的混合液于


4℃,500g


离心


5min


,上清收集,


观察融合蛋白是否饱和地挂在


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上,用


1ml


冰冷的细胞裂解缓 冲液洗三次


beads





4




把转染目的基因的细胞


(5×106)


裂解 在


0.5ml


细胞裂解液里


(含蛋白酶


抑制剂)


,最大转速


4℃离心


20min,


收集上清液。


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