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各种显微技术——制片——染色

作者:高考题库网
来源:https://www.bjmy2z.cn/gaokao
2021-02-28 03:05
tags:

-

2021年2月28日发(作者:浓缩)



形态学研究技术




一、



显微镜介绍




PPT 3~18




二、



固定




PPT 19~20




三、



组织切片




PPT 21~25




四、



组织染色




PPT 26~30




五、



免疫组织化学

< br>/


免疫细胞化学




PPT 31~56




六、



荧光染料




PPT 57~65




七、



定量分析




PPT 66~77




八、



应用




PPT 78~88




九、



电子显微镜




PPT 89~102





一、



显微镜的介绍



★四种光学显微镜:< /p>


亮视野;相差;微分干涉相差;暗视野


(用的非常少,比如原位杂 交中同位素标记的


点是亮的,用暗视野显微镜在暗背景下看到的亮点会更清楚)




★倒置显微镜


:可 操作空间大,可以做电生理等实验,最常用的观察方法是相差,由于此方法不需要染色,


因此是观察活细胞的理想方法,分辨率不如正置



组成和普通显 微镜一样,只不过物镜与照明系统颠倒,前者在载物台之下,后者在载物台之上,倒置


显 微镜和放大镜起着同样的作用,就是把近处的微小物体成一放大的像,以供人眼观察。只是显微镜比放

< p>
大镜可以具有更高的放大率而已。目镜的作用与放大镜一样。所不同的只是眼睛通过目镜所看到的不 是物


体本身,而是物体被物镜所成的已经放大了一次的像。




★体视显微镜:


视野大可作精细解剖 和


/


或胚胎,分辨率不如正置



1




双目镜 筒中的左右两光束不是平行的,而是具有一定的夹角——体视角(一般为


12

< p>


---15


度)


,因此 成像具有三维立体感;



2


.像是直立 的,便于操作和解剖,这是由于在目镜下方的棱镜把像倒转过来的缘故;



3


.虽然放大率不如常规显微镜,但其工作距离很长



4


.焦深大,便于观察被检物体的全层。



5




视场直径大。



★荧光显微镜:光源是汞灯


,


有滤镜。固定后的细胞、组织 用荧光染料;活体细胞用荧光蛋白。



荧光显微镜和普通显微镜有以下的区别:


< br>1.


照明方式通常为落射式,即光源通过物镜投射于样品上;


2.


光源为汞灯紫外光,波长较短,分辨力高于普通显 微镜;



3.


有两个特殊的滤光片, 光源前的用以滤除可见光,目镜和物镜之间的用于滤除紫外线,以保护人目。



(荧光素的标记只是作为一种指示剂,不像电子显微镜下面看到的是真实物体,要真正敲定某


种物质的


location


只能借助电镜)




★共聚焦显微镜

< br>:


(结构,原理)光源不是汞灯


,


是激光器,


(注:在观察的时候,使用汞灯为光源,拍摄的


时 候使用激光器)与普通的


CCD


成像不同


,


普通的


CCD


成像杂光多,不清 晰,颜色是真彩


,


共聚焦显微镜的


颜色 是伪彩(同一个激光器有几个不同的波长,可据荧光素选择具有需要波长的激光器。不同于普通荧光


显微镜激发光是某一波段内的光,激光器发出的是某一特定波长的光,能量集中,功率大。

< p>



从一个点光源发射的探测光通过透镜聚焦到 被观测物体上,如果物体恰在焦点上,那么反射光通过原



透镜 应当汇聚回到光源,这就是所谓的共聚焦,简称共焦。共焦显微镜


(CLSM

< p>


LSCM)]


在反射光的光路上


加上了一块半反半透镜,将已经通过透镜的反射光折向其它方向,在其焦点上有一个带有针孔

< p>
(Pinhole)



小孔就位于焦点处,挡板后 面是一个光电倍增管


(photomultiplier tube


PMT)


。可以想像,探测光焦点前

后的反射光通过这一套共焦系统,必不能聚焦到小孔上,会被挡板挡住。于是光度计测量的就是焦点处的


反射光强度。其意义是:通过移动透镜系统可以对一个半透明的物体进行三维扫描。




★成像系统



1


digital camera imaging system(CCD)


(真彩)




CCD


的真实名称为电荷耦合器件 ,工作原理是


CCD


将光线转换成模拟电压信号,并且标出每个 象素的灰度


级,再由一个模数转换器将模拟电压信号转换为数字信号,每种颜色使用


8



10



12


位来表示,逐点扫描


后,通过扫描图像专 用格式保存在电脑里。成像过程中,光源发出的光必须经过镜片的反射和透镜的聚焦,


且 得到的图像是真彩。



2


共聚焦成像< /p>


-----


激光共聚焦显微镜(伪彩)




有小孔,分辨率高,但进入的光量也少,需在两者间达到平衡 ;不是


CCD


那种全量,而是只扫描某个部分,


得到的


pic


每张都在焦点上,可以叠加;得到的灰 白


pic


可以人为赋予各种颜色。




二、



固定





固定的目的和作用



若想得到理想的染 色结果、正确地判断抗原物质在组织细胞内的位置,除需有良好的酶和抗体外,保


持组织 细胞内抗原物质的不动性(


immobility


)和免疫活性 也是至关重要的。



固定的目的在于迅速终止酶的活性,避免组 织细胞结构的解体,阻止细胞内外肽类和蛋白质的扩散移


位,增强组织细胞对标本制作过 程中各种有害影响的对抗作用,总之,在于达到固定抗原和保存组织细胞


形态结构的目的 。


尤其是保持抗原分子上有限数目氨基酸顺序和抗原决定簇的完整性,保持抗原分子三维


空间构型的稳定性以便于结合特异性抗体。尤其是大多数神经激素和肽类物质,因为具有 水溶性,在进行


免疫组织化学研究之前,常常需要固定处理。但是肽类物质和蛋白质的物 理化学性质不同,因而对不同的


固定剂或者固定方法的适应程度也不尽相同。某些固定剂 甚至可以同时破坏和


/


或保护同一抗原物质的不同


抗原决定簇。因此,在进行免疫组织化学研究的时候,先要了解所研究物质(如蛋白质和肽类)的化学 性


质,再根据需要来选用适宜的固定剂或固定方法,改进固定的条件。

< br>



★固定剂



选择最佳固定液的标准是:①最好地保持细胞和组织的形态结构;②最大限度地保存抗原的免疫活性。< /p>



值得注意的是免疫组织化学技术中禁用含重金属的固定液。



免疫组织化学研究中常用的固定剂:



交联固定:多聚甲醛、戊二醛(


glutaraldehyde




沉淀固定


:


乙醇、甲醇、丙酮(


acetone




细胞可选择的固定液多,一般固定


10min



20min





pH


:较多中性固定液(


PH 7.4



,有时也会用酸性或碱性固定液




用不同的磷酸缓冲液配制


PFA


(多聚 甲醛)


,得到酸、中、碱性固定液。






固定的时间:长

< br>,


对组织结构有好处


,


但对抗原 不一定好;组织固定时间最好在


l2h


内,一般固定时间不


应超过


24


小时。随着固定时间的延长对组 织抗原的检出强度将逐渐降低。




★常用的固定方法有两种:浸入法和灌注法。



浸入法即将组织浸泡在固定液内


(必要时在


4


℃下)



固定时间根据抗原的稳定性以及固定液 的性质而定,



一般在


2-12h


之间。



灌注法主要适用于动物研究;灌注 固定可以使固定液迅速到达全身组织充分固定。



< p>


Procedure


(灌注

,


浸泡


,


后固定)





蔗糖(


10%


20%



30%



-----


高渗的蔗糖溶液,能够置换出水,所以可作为冰冻切片前的冻融保护 。



1


冰冻切片时的冻融保护




2


提高染色时抗原 的浓度。



蔗糖脱水的作用:




★固定时应注意



力求保持组织新鲜,勿使其干燥;



组 织块不宜过大过厚,组织块厚度必须控制在


0.3cm


以内;固 定液必须有足够的量,在体积上一般大


于组织


20


倍以上,否则组织中固定不良而影响效果;



组织固 定后,应充分水洗,去除固定液,以减少固定液造成的人为假象。





三、切片



★冰冻切片



是免疫组织化学中最常用 的一种切片方法,能够最大量的保存抗原、操作简便,主要适用于不稳定


的抗原(如检测 细胞膜的某些抗原成分)


,但标本来源受限。新鲜的组织及已固定的组织均可作冰冻切片 。



冰冻切片时


,

组织中水分易形成冰晶


,


影响抗原定位。冰晶小而多,对组 织结构损害大。因此可采用


以下措施减少冰晶的形成:


①速冻,


缩短组织从


-33


< br>-43


℃的时间。


(用干冰或液氮,

但液氮易使组织冻裂)


②将组织置于


20%-30%


蔗糖溶液中


1-3


天,利用高渗吸收组织中水 分,减少组织含水量。



冰冻切片一般用恒冷切片机。切片后如 不染色,必须将切片吹干,贮存于低温冰箱内,进行短暂预


固定干燥后贮存于低温。



1


不用任何包埋


,


迅速


,



, 4



5


μ


m,


可以保存很长的时间



冰冻切片优缺点


:○


2


缩短了制片时间




3


抗原性不受损失




4


对稳定性 差的抗原,如淋巴细胞表面抗原尤其适合。





★石蜡切片:



在冰冻切片染色不好的情况下可选用石蜡切片,可作抗原修复。



抗原修复:组织在制作过程中


,


由于化 学试剂的作用


封闭了抗原


,又由于热的作用致使部分抗原的肽链 发生


扭曲


,


致使在免疫组化的染色过程 中不能将其显示出来,为了解决上述的问题


,


利用化学试剂和热 的作用



这些抗原重新暴露出来或修正过来的过程


称为抗原修复。




在制作 切片或超薄切片时,由于组织是柔软的,或局部的软硬不均,这样制作厚薄均匀的切片是困难的。


所以有必要用一定物质浸透组织内部,整个组织一样硬化,以利于切成薄片,这种物质叫做


包埋剂。




包埋


:就是将已经固定,脱水,透明,浸蜡的组织快从最后的蜡浴取出置入充满熔融石蜡的包埋框内, 包


埋成块,使组织和包埋剂相容一体并迅速冷却,这个程序称为包埋。包埋剂凝固后,进 一步加强了组织的


硬度和韧度而便于进行切片。




1


石蜡切片是制作组织标本最常用、 最基本的方法



石蜡切片的优缺点


:○


2


最大优点是组织形态保存好,且能作连续切片,有利于各种染 色对照观察;





3


石蜡块还能长期存档,供回顾研究。




4


石蜡切片制作过程对组织内抗原显 现有一定的影响,但可通过某些措施予以改善,



因而它是大多 数免疫组化中首选的组织标本制作方法。



HE


染色石蜡切片制作的基本过程(了解)



< p>
1


、取材与固定



?



从人或动物新鲜尸体上取下组织块


(< /p>


一般厚度不超过


0


5


厘米


)


投入预先配好的固定液中


(10


%福尔马林,


Bouin


氏固定液等


)


使组织、细胞的蛋白质变性凝固 ,以防止细胞死后的自溶或细菌的分解,从而保持细胞


本来的形态结构。




2


、脱水透明

< p>



一般用由低浓度到高浓度酒精作脱水剂,逐 渐脱去组织块中的水份。再将组织块置于既溶于酒精,又溶于


石蜡的透明剂二甲苯中透明 ,以二甲苯替换出组织块的中酒精,才能浸蜡包埋。





3


、浸蜡包埋




将已透明的组织块置于已溶化的石蜡中,放入溶蜡箱保 温。待石蜡完全浸入组织块后进行包埋:先制备好


容器


(


如折叠一小纸盒


)


,倒入已溶化的石蜡,迅速 夹取已浸透石蜡的组织块放入其中。冷却凝固成块即成。


包埋好的组织块变硬,才能在切 片机上切成很薄的切片。



(生物秀实验频道






4


、切片与贴片



?



将包埋好的蜡块固定于切片机上,切成薄片,一般为


5



8


微米厚。切下的薄片往往皱折,要放到加热 的水


中烫平,再贴到载玻片上,放


45


℃恒温箱中烘干。




5

< p>
、脱蜡染色



?



常用


HE


染色,以增加组织细胞结构各部分 的色彩差异,利于观察。苏木精


(Hematoxylin


,< /p>


H)


是一种碱性染


料,可将细胞核和细胞 内核糖体染成蓝紫色,被碱性染料染色的结构具有嗜碱性。伊红


(Eosin

< p>


E)


是一种


酸性染料, 能将细胞质染成红色或淡红色,被酸性染料染色的结构具有嗜酸性。染色前,须用二甲苯脱去

切片中的石蜡,再经由高浓度到低浓度酒精,最后入蒸馏水,就可染色。




HE


染色过程是:

< br>?



①将已入蒸馏水后的切片放入苏木精水溶液中染色 数分钟。


?



②酸水及氨水中分色,各数秒钟。


?



③流水冲洗


1


小时后入蒸馏水片刻。< /p>


?



④入


70


%和


90


%酒精中脱水各


10


分钟。


?



⑤入酒精伊红染色液染色


2


< br>3


分钟。




6


、脱水透明



?

< p>


染色后的切片经纯酒精脱水,再经二甲苯使切片透明。




7


、封固



?



将已透明的切片滴上加拿大树胶 ,盖上盖玻片封固。待树胶略干后,贴上标笺,切片标本就可使用。




★振动切片


用振动切片机(


Vibratome


,可以把新鲜组织(不固定不冰冻)切成厚片


20



100


μ


m


,以漂浮 法在反应



板进行免疫组织化学染色,然后在解剖显微镜下检出 免疫反应阳性部位,修整组织进行后固定,最后按电


镜样品制备、脱水、包埋、超薄切片 、染色观察等。


组织不冰冻,无冰晶形成和组织抗原破坏


,在免 疫组


化染色前避免了组织脱水、透明、包埋等步骤对抗原的损害,能较好地保留组织内脂 溶性物质和细胞膜抗


原,主要用于显示神经系统抗原分布研究。这种包埋前染色,尤其实 用于免疫电镜观察。



应用:一是做电镜


,


常温最薄切到


50


μ


m




二是做漂片


,


即切一些厚的片子


,


把它漂在容器里染色


,


使两面都可以浸透;


三是做脑片


,


但与做电镜的横向 的切片机不同


,


要用


垂直的振动切片机 。



水平振动切片机


:室温下切,组织 软,可得的比较厚的切片;可做漂片,两面都可以染色。



垂直 振动切片机


:垂直切割,得到的切片上细胞可正常存活,可做脑片。



四、组织染色





普通的组织染色:苏木精和伊红染 色(


HE


染色)


< br>苏木精



碱性染料


,


结合组织的酸性化合物


,


染出的是


蓝~紫色



嗜碱性的核


,


细菌


,



等 被苏木精染成


蓝色


.


时间长



伊红:



酸性染料

,


结合组织的碱性化合物


,


被伊红 染色的结构呈粉~红色。


伊红对细胞质、肌纤维、胶原


纤维具有 着色性。





特殊染色:其他细胞结构只有特殊染色后才能被光学显微镜识别


.


(如用尼氏染色染尼氏小体)





尼氏染色


(Nissl stain )



RNA



DNA


染成紫色。在神经元细胞质上的尼氏小体被认为是核糖体和糙面内


质网。这种染色将尼氏小体染成紫色。





衬染:非特异性背景染色。



HE


染色(苏木精


-


伊红染色)



染料的染色原理:



1


)化学作用:染料的性质有酸、碱、中性之别,那么组织中的碱性 部分(如细胞质)


易和酸性染料亲和而发生作用,组织中的酸性部分(如染色质)易和碱 性染料亲和而发生作用。



2


)物理< /p>


作用:指吸附或溶解作用。组织蛋白和某些染料有相互吸附的作用。



媒染剂、促染剂和分化剂



媒染剂


:某些天然染料(如苏木精)



本身无 着色性,要与其他物质结合后才具有着色性


,这些被结合的物


质 称为媒染剂,如许多铁盐、铬盐及钾盐等。



促染剂

< p>
:是促进染料着色性的物质,如冰醋酸是伊红的促染剂。



分化剂


:能使切片上需要显示的结构清晰,而使不需要显示的结构脱去颜色的物 质。如


1%


盐酸酒精。



一、苏木精


-


伊红染色(


H .E


染色)



所做出的石蜡包埋切片可 应用的染色方法很多,应根据不同的检查目的而选用不同的染色方法。而最为常


用的染色 法为


H.E


染色。


< br>1


、苏木精


(


苏木素、苏木紫< /p>


)



hematoxylin

< p>


:为从苏木中提取。苏木精本身不是染料,不能直接染色,必

< p>
须经氧化才能染色。可以在空气中自然氧化,但需时很长,所以一般都是加氧化剂(如碘酸钠)氧化 。同


时,被染材料又须经媒染剂作用后才有着色能力,所以在配制苏木精染液时,都加有 媒染剂。苏木精液主


要着染细胞核。



有数种不同配方的苏木精液。



May er(


梅耶


)


氏苏木精液:

< p>


苏木素







1g


硫酸铝钾





50g


(媒染剂)


-


-


-


-


-


-


-


-



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