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protocol
:
PI
染色检测细胞周期
1
、收集细胞:
胰酶(
含
EDTA
)消化收集对数生长
期细胞(加热处
理后损失多的组宜多收集细胞保证细胞有
0.5
-2
×
10
*6
个),吸取旧
培养基到一个新离心管里;少量常温
PBS
p>
(根据培养皿大小决定量,
PBS
洗可以保
证消化效率)洗
2
次,清洗的
PBS<
/p>
也要收集到上述离
心管内
【检测凋亡才需
收集旧培养基及清洗的
PBS
】
;
p>
然后胰酶消化
(注意一定要消化完全,
显微
镜下观察细胞呈单个,
而不是成片脱落)
后利用旧培养基中和胰
酶;离心
(1000r
/300g
5min)
收集细胞沉淀。
2
、用预冷的
PBS
清
洗细胞两次。
3
、固定细胞:
用
0.5ml
预冷的
PBS
重悬细胞沉淀,使细胞充分悬浮
成单细胞,再将重悬细胞
加入
1.2ml
预冷的
99.7%
p>
无水乙醇
(
乙醇终
浓度
70%)
,吹打混匀以免细胞团聚,
4
℃固定
2H
至过夜。
4
、细胞染色:离心(
1
000r
/300g
5min
)收集固定的细胞,以
1.8
mL
的
PBS
洗细胞一次,
离心
(
第一次实验时用
7000rpm
才把细胞离
心下来,
< br>但最后流式结果显示细胞没有碎
)
再次获取细胞沉淀后加
入
1
00
μ
l
RNaseA
于
37
℃水浴
30min
,最后加入
400
μ
lPI
避光染色
30
min
(常温或
4
℃均可
)
【有的试剂盒说明是:
每个样本加
入
500uL
染色剂
(据样本数,
p>
用
P
BS
临时配好
总量,其中
PI
50ug/ml
、
RNase
A
100ug/mL
、
Triton
X-100
0.2%
)
4
℃
避光
染色
30
分钟】
5
、流式分析
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