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眼脉络膜黑色素瘤OCM-1细胞的机制

作者:高考题库网
来源:https://www.bjmy2z.cn/gaokao
2021-02-12 15:34
tags:

-

2021年2月12日发(作者:客房)


眼脉络膜黑色素瘤


OCM-1


细胞的机制














【摘要】




【目的】



研究


-


70


℃反复冻融体外杀伤人眼脉络膜黑


色素瘤细胞系


OCM-1


的机制。


【方法】


OCM-1

< p>
细胞反复冻融后


,


用噻唑蓝比色法


及克隆形成实验检测细胞的杀伤情况和细胞生长活力


,


免疫组织化学方法检测细



P16


表达 的变化


,


电镜及共聚焦显微镜观察冻融后细胞凋亡和坏死的形态 学改



,


并测定细胞的凋亡比率


,


流式细胞仪检测冻融前后细胞


CD40


表达比率及细胞


膜电位的变化。


【结果】< /p>



噻唑蓝比色法检测及克隆形成实验显示


,


冻融可以直接


杀伤


OCM-1


细胞


,


且残存的细胞生长能力也明显受抑制。 免疫细胞化学染色见对


照组的细胞呈


P16

阳性


,


而冻融后的细胞均呈阴性


,


冻融后培养的细胞部分呈阳


性。


电镜下 观察到冰晶的结构特征及细胞的坏死和凋亡等变化。


激光共聚焦显微

镜观察发现凋亡细胞随着冻融次数的增加而增多。


流式细胞仪测定显示冻融后细


胞膜电位下降


,


冻融前后


CD40


阳性细胞比率差异明显


,

且呈一定的量效关系。


【结论】冻融不仅可以明显杀伤


OC M-1


瘤细胞


,


还能抑制残存瘤细胞生 长。反复


冻融能诱导大量的肿瘤细胞发生凋亡


,


此为杀伤肿瘤及诱导肿瘤退变的直接原



,


其机制与线粒体膜电位及


P16


表达下调有关。 冻融后瘤细胞坏死因子


CD40


表达增强


,


可能是增强机体的免疫应答


,


介导 机体免疫杀伤瘤细胞的机理。







【关键词】




反复冻融


;


脉络膜黑色素瘤


;


细胞凋亡


; CD40;


线粒体


膜电位






A bstract:



Objective



To


investigate


the


mechanism


of


repeating


-


70 ℃ freeze thawing on human choroidal melanoma cell line OCM


-1.



Meth ods



OCM-1 cells were frozen by repeating -


70 ℃ freeze thawing


for various frequency,


then


the death


rate of cells were examined


by MTT


essay.


The


cell


viability


was


measured


by


clone


essay.


The


morphological


changes


of


the


cells were


observed


using


electron


microscope


and


the


P16


immunocytochemistry staining was performed. The cell apoptosis rate of


the


OCM-1


cells


was


examined


by


laser-scanning


confocal


microscopy


(LSCM).


The cell CD40 positive rates and mitochondrial membrane potential (MMP)


were observed by flow cytometry (FCM).< /p>



Results


Growth of OCM-1 cells


was


inhibited


by


repeating


-


70



freeze


thawing.


And


that


showed


freeze


frequency dependent effects (P50


为一个克隆


,


计算克隆形成率。









免疫细胞化学染色







细胞经 冻融处理后


,


收集细胞


,PBS


洗涤


,


吹散


,


用微量加样枪滴片


,


风干

,


甲醇固定。


3%H2O2


封闭内 源性过氧化物酶


10 min,


加血清并水浴


10 min,


加入一



P16


,


依次加入二抗


,S-P/HRP


复合物


,


上述步骤均以


PBS


缓冲液稍洗


3



,DA B


显色,Maye′s 苏木素复染细胞核


,

< br>常规脱水、透明、封片。显微镜下观察。









透射电镜观察






< /p>


细胞冻融处理后


,


收集细胞


(


细胞数量≥1


×


107 个


/mL)


。加入


PBS,


1


000 r /min


离心


10 min(r=12 cm),


弃上清。放入预冷的


2%


多聚甲醛


2


戊二醛前


固 定液


( pH


值为


)


中,4 ℃固定


2 h,


再次离心后 弃上清。制作电镜切片


,


在透


射电镜下 观察及拍照。









激光共聚焦显微镜观察







细胞经 冻融处理后


,


收集细胞


,PBS


洗涤


,


吹散


,


用微量加样枪滴片


,


风干

,


甲醇固定。水洗


3


min,



Hoechst


33342


染色


5

< br>min,


晾干


,


甘油封片。共聚 焦显


微镜下观察。









流式细胞仪检测细胞线粒体膜电位的改变






< /p>


细胞冻融处理后


,


收集细胞


(


细胞数量≥1


×


10 6)。洗涤


2



,

加入荧光


染料


Rhodamine 123


至终浓度


5


μ


mol/L,



37 ℃、


5%CO2


培养箱中负载细胞


30


min



,


再次洗涤


2



,


在流式细胞仪下


,


待荧光强度稳定后


,


每隔


30


s


计数


10 < /p>


000


个细胞


,


连续


5


次。荧光强度高低代表细胞线粒体膜电位大小。









流式 细胞仪测定


CD40


比率






< /p>


细胞按上述方法冷冻后


,


收集细胞


(


细胞数量≥1 × 106),每管加入


100


μ


L



15%


多聚甲醛的


PBS,4 ℃固定


15 min,


离心

,


弃固定液。加入含


10%FCS



PBS


4


℃封闭


2


h,


洗涤


3


次后


,


每管加入


5


?


< br>g/mL



CD40


单抗各


100


?



L,


4



孵育


1 h,


再次洗涤


3


,


于每孔中加入


1 ∶ 1 000


稀释的


FITC


羊抗鼠


IgG


作为


荧光二抗,4 ℃作用


h


后取出


,


充分洗涤


3


次后


,


并设空白对照管


,


使用流式细胞


仪检测


,


并分析数据。









统计学分析方法






< /p>


实验的数据均使用


x±s


表示

< p>
,SPSS


软件对数据进行统计学分析。






2
















细胞的杀伤比率







随着冻 融次数增多


,


杀伤比率明显增加


(



1)










克隆形成实验结果







对照组 细胞克隆形成较为均匀


,


克隆率为%


±


%。冻融后


,

细胞的贴壁能


力及生长能力明显减弱。


克隆形成较小


,


数目较少


,


并随着 冻融次数的增加克隆形


成的量进一步下降


(


1)










免疫细胞化学染色结果







对照组 细胞


P16


阳性


(


1A),


而冷冻后的细胞均呈阴性


(



1B),


冷冻后


培养的细胞部分呈阳性


(



1 C)










电镜观察结果







对照组 结构完整


,


细胞为不规则圆形或多角形


,


胞浆丰富


,


胞质均匀


,



质内有丰富的线粒体、粗面内质、核糖体、高尔基 器、溶酶体和微丝


;


核膜清晰


,


核大


,


核仁明显


,< /p>


能见到核分裂。


冻融后的细胞内发现梭形


,


边界清晰


,


低密度的裂



,


为早期冰晶的超微结构


(



2A)



镜下见大量不同时期的凋亡细胞及典型的凋


亡小体


(

< p>


2B)



坏死的细胞密 度降低


,


细胞膜破裂


,


消失


,


细胞成分外溢


,


染色质、


胞质均溶解


;


有的细胞仅余核仁和完整的核膜


,


其他细胞成分均消失。









共聚焦显微镜观察细胞形态变化







对照组细胞


Hoechst 33342


染色见细胞核蓝色


,


规则圆形


,


大小均一


(



3A )



冻融处理的细胞


,


镜下可见凋亡细胞的细胞核固缩而被


Hoechst


33342


染成


亮蓝白色。不同冻融次数出现的凋亡细胞比率差 异明显


(



1)


。×3


组出现凋亡


细胞为最多


(



3B)



坏死的 细胞


,


细胞膜消失


,

< br>细胞内容物逸出


,


核内容物脱出呈


带尾的丝状或礼花状


(



3C)



凋亡细胞随着冻融次数的增加而增多


,< /p>


达到一定程


度后随着坏死细胞的增加反而减少。

< br>








流式细胞仪检测细胞线粒体膜电位的改变






< /p>


冻融作用后


,OCM-1


细胞线粒体的膜 电位下降


,


增加冻融次数


,

< p>
下降程度


更加明显


(


表< /p>


1)










流式细胞仪测定细胞


CD40


的阳性比率







对照组的


OCM-1


细胞也有%


±


%的细胞表达


CD40,


随冻融次数增加


,CD40


表达率上升


(



1)


< p>





3















< /p>


冷冻治疗后


,


细胞内冰晶形成杀伤肿瘤< /p>






Gage


等认为细胞内冰晶形成和冰晶的机械损伤是最重要的 机制


:


细胞


外液凝固结晶使细胞处于相 对的高渗状态


,


致使细胞脱水和皱缩


,


而细胞外间隙


形成的高渗状态使得冰晶容易通过细胞膜的微孔进 入细胞


,


促使细胞内冰晶的形



,


细胞膜的完整性被破坏。最后细胞内高度浓缩的电解质破坏细胞使之 坏死、


溶解。但是


,


此前的研究并没有 发现冰晶的超微结构特征。本研究在电镜下发现


早期冰晶形成的结构特征


,


直接证明了冻融通过形成细胞内冰晶杀伤肿瘤细胞


,


细胞外冰晶形成可以使细胞脱水、皱缩


;


而细胞内冰晶的形成则使细胞坏死、死


亡。









反复冻融诱发

OCM-1


细胞发生凋亡及其机制


-


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